Скачать статью в PDF формате
English version
УДК 619:616.995.121.56
АНТИГЕННАЯ АКТИВНОСТЬ КЛЕТОЧНЫХ МЕТАБОЛИТОВ ПРОТОСКОЛЕКСОВ Coenurus cerebralis
В.К. БЕРЕЖКО
доктор биологических наук
И.И. БЕНЕДИКТОВ
доктор биологических наук
И.Ф. КЛЕНОВА
кандидат ветеринарных наук
Всероссийский научно-исследовательский институт гельминтологии им. К.И. Скрябина, 117218, Москва, ул. Б. Черемушкинская, 28,
e-mail: vigis@ncport.ru
Приведены результаты анализа сывороток крови овец, иммунизированных двукратно внутримышечно экскретами и секретами культивируемых клеток протосколексов Coenurus cerebralis (клеточный антиген), иммуноферментной реакцией ELISA. Установлена высокая антигенная активность клеточного антигена. Показатели оптической плотности (ОП) в ELISA сывороток иммунизированных овец в период эксперимента (110 сут) в среднем по группе составили 2,339, что выше таковых до иммунизации (0,314) в 7,45 раза. В контрольной группе овец показатели ОП были в среднем 0,201–0,251.
Ключевые слова: овцы, протосколексы, Coenurus cerebralis, метаболиты клеток, иммунизация, антителогенез.
Важным критерием оценки антигенности вещества является его способность вызывать выработку антител и специфически взаимодействовать с эффекторами иммунного ответа – иммуноглобулинами, сенсибилизированными лимфоцитами. С этих позиций, биопрепараты, получаемые из гельминтов, включая гомогенаты, экстракты, экскреты и секреты и т.д., являются активными антигенами, поскольку при парентеральном введении животным у них происходит синтез антител, вступающих в специфическую реакцию с этими антигенами. Физико-химическими методами установлено, что биопрепараты из гельминтов имеют в своем составе более 20 белковых компонентов, потенциально способных вызвать синтез антител, однако функциональных антигенноактивных белков, стимулирующих антителогенез в организме хозяина при заражении, значительно меньше (1, 2, 4, 5, 7–9).
Исследователи отметили характерные различия иммунной реакции как в количественном, так и в качественном отношении в различных системах паразит–хозяин, зависящие от морфологических и биологических особенностей гельминтов, их локализации и адаптационной способности.
Как правило, иммуногенное воздействие неадаптированных к данному организму паразитов проявляется сильнее, чем это наблюдается в системе паразит–специфичный хозяин. Однако существуют различия в проявлении иммунной реактивности при заражении и при иммунизации животных антигенноактивными биопрепаратами гельминтов. В большинстве случаев при правильно подобранной дозе антигенного воздействия реакция со стороны иммунной системы специфического хозяина будет значительно сильнее, чем при заражении.
Исходя из этого была поставлена цель – изучить динамику выработки антител у овец, иммунизированных клеточными метаболитами протосколексов Coenurus cerebralis.
Материалы и методы
В опыте использовали шесть овец 4–5-месячного возраста, три из которых были иммунизированы двукратно с интервалом 21 сут клеточным антигеном протосколексов C. cerebralis, эмульгированным с полным адъювантом Фрейнда (ПАФ), внутримышечной инъекцией в дозе 1 мл. В общей сложности каждое животное получило 18,76 мг белка-антигена. Вторая группа из трех овец служила контролем, иммунизации не подвергалась; в дни иммунизации им вводили внутримышечно стерильный физраствор в той же дозе.
Метаболиты клеток или клеточный антиген получали культивированием клеток протосколексов C. cerebralis в CO2-инкубаторе фирмы «Heraeus» при 37 оС с автоматизированной регулировкой газовой среды (СО2 – 5 %, O2 – 95%) при 70%-ной влажности в питательной среде RPMI-1640 [3, 6].
В течение всего опыта от животных получали сыворотку крови: до иммунизации, на 10, 15, 20-е сутки после первой и на 10, 16, 24, 38, 43, 50, 56, 64, 85 и 89-е сутки после второй иммунизации. Активность сывороток исследовали иммуноферментной реакцией ELISA [10] с модификациями применительно к нашим объектам.
Сенсибилизацию твердой фазы проводили клеточным антигеном, предварительно определив его оптимальную концентрацию. Конъюгатом в реакции служили антитела диагностические против lgG сыворотки крови овцы, меченные пероксидазой.
При определении оптимальной концентрации клеточного антигена и титра антивидового конъюгата использовали в качестве положительного контроля сыворотки иммунизированных, а отрицательного – сыворотки клинически здоровых овец. Реакцию оценивали на автоматическом анализаторе колориметрическом иммуноферментном 340/АТС фирмы «STL-Labsistems» – Австрия при длине волны 492 нм по показателем оптической плотности (ОП).
Результаты и обсуждение
Иммуноферментный анализ сывороток иммунизированных овец показал, что клеточный антиген протосколексов C. cerebralis является активным стимулятором антителогенеза.
С 10-го дня после иммунизации в кровотоке овец регистрировали сывороточные антитела, уровень которых по показателям ОП в ИФР был в 3,4–9,9 раза выше, чем до иммунизации (табл. 1).
Динамика титров сывороточных антител к антигенам-метаболитам протосколексов C. cerebralis, приведенная в таблице 1, показала, что повторная иммунизирующая доза в определенной степени активизировала гуморальный иммунный ответ, который сопровождался усилением процесса синтеза антител и соответственно увеличением показателей ОП исследуемых сывороток в ИФР у всех иммунизированных овец.
По результатам иммуноанализа уже с 10-х суток после второй иммунизации и до конца наблюдений уровень сывороточных антител оставался очень высоким (ОП от 2,225 до 2,794; P ≤ 0,001). Причем, судя по динамике антителогенеза, иммунная реакция у этой группы овец протекала однотипно, без резких колебаний. Сыворотки, полученные на 110-е сутки после первой и соответственно на 89-е сутки после второй иммунизации (срок наблюдений), оставались такими же активными в ИФР (показатели ОП были в пределах 2,530–2,794; P ≤ 0,001), что в 6,7–12 раз больше первоначальных уровней, регистрируемых с сыворотками крови овец до иммунизации.
Реактивность сывороток крови овец контрольной группы на всем протяжении эксперимента оставалась почти на одном уровне (ОП варьировала от 0,201±0,064 до 0,251±0,035) (табл. 2).
1. Динамика титров антител у овец, иммунизированных клеточным антигеном протосколексов C. cerebralis
|
Сутки иссле- дований |
Оптическая плотность в ИФР* у под- опытных животных под номерами |
|
|
||
|
|
2364 |
2359 2316 |
|
|
|
|
0 10 15 21** 31/10*** 37/16 45/24 59/38 64/43 71/51 77/56 85/64 106/85 110/89 |
0,210 2,095 2,020 2,014 2,337 2,368 2,464 2,545 2,566 2,493 2,322 2,570 2,488 2,530 |
0,414 0,319 1,794 1,538 1,813 1,943 1,937 2,123 2,312 2,225 2,267 2,250 2,431 2,464 2,356 2,545 2,525 2,525 2,458 2,317 2,472 2,463 2,491 2,570 2,567 2,613 2,794 2618 |
|
1,820±0,190 1,925±0,071 2,024±0,063 2,291±0,038 2,295±0,041 2,464±0,012 2,482±0,065 2,539±0,012 2,423±0,058 2,419±0,052 2,544±0,028 2,556±0,041 2,647±0,092 |
|
* – ИФР – иммуноферментная реакция (Р ≤ 0,001);
** – вторая иммунизация;
* * * – числитель – дни исследований после первой иммунизации, знаменатель – дни исследований после второй иммунизации.
Полученные данные позволяют заключить, что синтезируемые в процессе культивирования клеток протосколексов C. cerebralis метаболиты являются активными иммуногенами, активизирующими гуморальное звено иммунной системы, что проявляется синтезом специфических антител и дает основание говорить об альтернативном способе получения иммунопрепаратов из цестод.
2. Показатели ИФР с сыворотками контрольных (неиммунизированных) овец
|
Сутки иссле- дований |
Оптическая плотность в ИФР* у подопытных животных под номерами |
|
|
||
|
|
2377 |
2303 2329 |
|
|
|
|
0 15 31 37 45 49 57 78 110 |
0,297 0,259 0,300 0,299 0,302 0,293 0,295 0,278 0,280 |
0,177 0,160 0,231 0,241 0,211 0,243 0,203 0,193 0,201 0,211 0,242 0,204 0,207 0,198 0,149 0,174 0,176 0,173 |
|
0,211±0,037 0,244±0,012 0,251±0,035 0,232±0,035 0,238±0,035 0,246±0,029 0,233±0,035 0,201±0,064 0,209±0,035 |
|
Литература
1. Баллад Н.Е. Иммунохимическая характеристика антигенов, выделенных из личиночных стадий Taeniarhynchus saginatus// Мед. паразитол. и паразит. бол. – 1973. – № 2. – С. 131–136.
2. Бережко В.К. Иммуноэлектрофоретический анализ антигенной структуры экстрактов из половозрелых Dictyocaulus filaria и Dictyocaulus viviparus// Тр. Всес. ин-та гельминтол. – 1972. – Т. 19. – С. 14–23.
3. Бережко В.К., Бессонов А.С. Изучение метаболитов клеток перевиваемой культуры метацестоды Taenia crassiceps // Тр. Всерос. ин-та гельминтол. – 1996. – Т. 32. – С. 18–22.
4. Даргене Р.К. Антигены Trichinella spiralis, участвующие в иммуногенезе при экспериментальном трихинеллезе песцов // Тр. Всес. ин-та. гельминтол. – 1977. – Т. 17. – С. 275–276.
5. Желева Р.Ц. Сравнительное исследование антигенной структуры Toxocara canis (Werner, 1782) и Ascaris suum (Goez,1782) в реакциях иммунодиффузии и иммуноэлектрофореза // Мед. паразитол. и паразит. бол. – 1975. –
№ 3. – С. 243–249.
6. Кленова И.Ф. Разработка клеточной технологии получения антигенов цестод (на примере Coenurus cerebralis и Echinococcus multilocularis) // Дис.…канд. вет. наук. – М., 1999. – 125 с.
7. Geerts S., Kumar V., Aerts N. Antigenic components of Taenia saginata and their relevance to the diagnosis of bovine сysticercosis by immunoelectrophoresis // J. Helminthol. – 1979. – V. 53, N 4. – P. 293–299.
8. Smith W.D. Serum and mucus antibodies in sheep immunited with larvae antigens of Haemonсhus contortus //Res. Vet. Sci. – 1977. – V. 22, N 1. – P. 128– 129.
9. Smith W.D. Anti-larvae antibodies in the hiperinfected with Haemonchus contortus // Res. Vet. Sci. – 1977. – V. 22, N 3. – P. 334–338.
10. Voller A., Bidwell D., Huldt G., Engvall E. A microplate method at enzyme-linked immunosorbent assay and its application to malaria // Bull. Wed. Hlth. Org. – 1974. – V. l, N 2. – P. 209–211.
© 2016 The Author(s). Published by All-Russian Scientific Research Institute of Fundamental and Applied Parasitology of Animals and Plants named after K.I. Skryabin.
This is an open access article under the Agreement of 02.07.2014 (Russian Science Citation Index (RSCI) and the Agreement of 12.06.2014 (CABI.org / Human Sciences section).