Заражение малой бурозубки Trichinella spiralis посредством личинок мясных мух.

Скачать статью в PDF формате
English version
Фауна, морфология, систематика паразитов
УДК 619:616.995.132.6


ЗАРАЖЕНИЕ МАЛОЙ БУРОЗУБКИ Trichinella spiralis
ПОСРЕДСТВОМ ЛИЧИНОК МЯСНЫХ МУХ


О.Н. АНДРЕЯНОВ
кандидат ветеринарных наук
Всероссийский научно-исследовательский институт гельминтологии им. К.И. Скрябина,
117218, г. Москва, ул. Б. Черемушкинская, 28, e-mail: 1980oleg@mail.ru

  В экспериментальных условиях подтверждена возможность заражения малой бурозубки Trichinella spiralis посредством личинок мясных мух. Насекомо- ядные животные могут стать резервуарами трихинел- лезной инвазии в природном биоценозе.

Ключевые слова: малая бурозубка, Trichinella spiralis, зараженность, мясные мухи.

 

Природный очаг инвазии – это те биотопы или ландшафтные зоны, где экологические и особенно биоценотические связи обусловливают передачу возбудителя от его источника к восприимчивому животному без участия сельскохозяйственных животных и человека [3]. Членистоногие, моллюски, рыбы и некоторые беспозвоночные могут локализовать в себе трихинеллез- ную инвазию в околоводной среде [2].

Цель нашей работы – подтвердить передачу возбудителя трихинеллеза. Trichinella spiralis в природном биоценозе посредством личинок мясных мух.

Материалы и методы

Выделенную взвесь личинок T. spiralis из мышечной ткани обыкновенной лисицы после переваривания в искусственном желудочном соке пассировали per os на белых беспородных крысах в дозе 5 личинок на 1 г массы животного через инсулиновый шприц и молочный катетер с оливой на конце [5]. Инвазированных лабораторных животных содержали и кормили в условиях вивария в течение 45 сут. Затем лабораторных животных усыпля- ли эфиром, тушки закладывали на хранение в сетчатом контейнере в природ- ный биоценоз охотхозяйства (рис. 1).




Через 21 сут после закладки с мышечной ткани тушек проводили сбор личинок серой мясной мухи (Sarcophaga carnaifa) (рис. 2).


                                Рис. 1. Закладка тушек лабораторных         Рис. 2. Сбор личинок серой мясной мухи
                                      животных в природный биоценоз            с тушек лабораторных животных


Отловленным двум малым бурозубкам (Sorex minutus) после 7-часовой голодной диеты скормили собранных личинок мясных мух в количестве 6 и 12 особей (рис. 3). Затем землероек содержали в лаборатории [4].

Через 45 сут животных усыпили. Мышечную ткань на трихинеллез ис- следовали методом компрессорной трихинеллоскопии [8] и методом искус- ственного ферментирования [1].

Результаты и обсуждение

В результате экспериментального заражения возбудителем трихинеллеза

T. spiralis посредством транзитных хозяев личинок серой мясной мухи малых бурозубок животные были инвазированы гельминтозоонозом (рис. 4).


Рис. 3. Поедание личинок мух малой бу- розубкой Рис. 4. 45-дневные личинки T. spiralis в мышцах (увеличение х 40) 

                               Рис. 3. Поедание личинок мух малой             Рис. 4. 45-дневные личинкиT. spiralis в 
                               бурозубкой                                                        мышцах (увеличение х 40)

 

Методом переваривания в искусственном желудочном соке мышечной ткани тушек землероек массой 6 и 5 г были зарегистрированы личинки T. spi- ralis в количестве 139 и 94 экз. Интенсивность инвазии составила 23,2 и 18,8 личинок в 1 г мышц соответственно.

При экспериментальной работе с транзитными хозяевами в лаборатор- ных условиях ранее проведено заражение трихинеллами обыкновенного ежа и лабораторных мышей через поедание зараженных личинками T. spiralis жу- ков и их личинок [6, 7].

Таким образом, насекомоядные животные – бурозубки, куторы, ежи и другие, могут стать резервуарами трихинеллезной инвазии в природном био- ценозе. Посредством установленных трофических связей эта группа млеко- питающих может депонировать гельминтозную инвазию извне посредством беспозвоночных и их личинок, собранных с трупов инвазированных плото- ядных.

Литература

1. Владимирова П.А. Влияние различных факторов на ускорение процес- са переваривания мышц в искусственном желудочном соке для выявления личинок трихинелл в свинине: Дис. ... канд. вет. наук. – М., 1965. – 152 с.

2.   Одоевская И.М. Значение птиц в диссеминации личинок Trichinella spp. в прибрежных и водных биоценозах // Мед. паразитол. и паразит. бол. – 2011. – № 1. – С. 12–16.



3.   Орлов Н.П. Биологические основы лечения и профилактики парази- тарных заболеваний. – М.: Сельхозгиз, 1961. – 159 с.

4. Санитарные Правила по устройству, оборудованию и содержанию ви- вариев № 1045-73 от 12.08.1977 г.

5.   Скворцова Ф.К. Методика получения и наработки трихинеллезного антигена // Тр. Всерос. ин-та гельминтол. – М., 2003. – Т. 42. – С. 600–608.

6.   Bockeler W. Fortftihrende Untersuchungen an Kafem als experimentellen transiwirten Trichinella spiralis (Owen, 1835) // Zool. Ans. Sena. – 1977. – V. 1,

№ 2. – P. 24–76.

7. Kullman E., Nawabi S. // Z. Parasitenk. – 1975. – V. 36. – P. 234–240.

8.    Reissmann E. Kann die Trichinenschau ohne sanitaren Nachteil bes- charankt und verbilligt werden // Fleisch-u Milchhyg. – 1908. – V. 19, № l. – P. 1– 


© 2015 The Author(s). Published by All-Russian Scientific Research Institute of  Fundamental and Applied Parasitology of Animals and Plants named after K.I. Skryabin. 

This is an open access article under the Agreement of 02.07.2014 (Russian Science Citation Index (RSCI)) and the Agreemnt of 12/06/2014 (CABI org / Human Sciences section)