Дирофиляриоз плотоядных животных в Якутии, способ выделения из крови микрофилярий

Биохимия, биотехнология и диагностика

Скачать статью в PDF формате
English version
УДК 619:616.995.132

ДИРОФИЛЯРИОЗ ПЛОТОЯДНЫХ ЖИВОТНЫХ В ЯКУТИИ, СПОСОБ ВЫДЕЛЕНИЯ ИЗ КРОВИ МИКРОФИЛЯРИЙ


Г.Г. КОЛЕСОВА
кандидат ветеринарных наук Управление ветеринарии г. Якутска
А.Д. РЕШЕТНИКОВ, Е.С. СЛЕПЦОВ
доктора ветеринарных наук
А.И. БАРАШКОВА
кандидат биологических наук
Якутский научно-исследовательский институт сельского хозяйства, 677001, г. Якутск, ул. Бестужева–Марлинского, д. 23/1, тел. 21-45-74, + 792466212 78, e-mail: adreshetnikov@mail. ru

Выявлена зараженность плотоядных в г. Якутске D. repens и D. immitis. Разработан новый способ выделения из крови собак микрофилярий без центрифугирования.

Ключевые слова: плотоядные, дирофиляриоз, микрофилярии.


В последние годы отмечается тенденция распространения на территории Якутии ранее нерегистрируемых паразитарных болезней. Основными причинами обогащения фауны гельминтов, опасных человека и животных, являются неограниченные перемещения граждан и животных из других областей России, занос болезней из других стран. Так, на территории Якутии впервые зарегистрированы Dirofilaria immitis (Leidy, 1856) и D. repens (Railliet et Henry, 1891).

Дирофиляриоз у собак широко распространен во многих странах мира, в том числе, в Российской Федерации и странах Ближнего Зарубежья [1, 3, 6, 9,10].

В предыдущие годы дирофиляриозу собак было посвящено большое количество работ, в том числе отечественных исследователей [1, 2, 5, 7, 9], которые сообщали о распространении дирофиляриоза в том или ином регионе. Заболевание приводит к эмболии, тромбозу кровеносных сосудов, а в дальнейшем циррозу печени, асциту и гибели человека и животных [12, 13].

В последние годы отмечена тенденция к широкому распространению этого заболевания и расширению ареала его распространения не только на юге, но и в средней полосе России [9].

При диагностике дирофиляриоза плотоядных большое значение имеет выделение из крови микрофилярий.

Целью работы было выявление зараженности плотоядных животных Якутии дирофиляриями, определение их видовой принадлежности, оценка эффективности различных методик исследования крови на наличие личинок дирофилярий и разработка эффективного способа выделения из крови микрофилярий с концентрацией последних без центрифугирования.

Материалы и методы

Материалом исследований служили трупы одного песца, одной кошки и шести собак, пробы крови трех подозреваемых на дирофиляриоз собак.
Испытана эффективность следующих методов выделения из крови микрофилярий:[3];

1) Исследование нативного мазка крови на предметном стекле;
2) Прямое исследование мазка крови при малом увеличении микроскопа
3) Центрифугирование цитрированной крови [8] (несколько миллилит
ров крови смешивают с жидкостью, состоящей из 95 мл 5%-ного раствора формалина, 5 мл ледяной уксусной кислоты, 2 мл концентрированного спиртового раствора генцианвиолета; полученный раствор центрифугируют, а осадок исследуют на наличие личинок нематод);
4) Выделение из крови больных сахарным диабетом личинок гельминтов (патент РФ № 2287815 С2, 2006.01, G01N33/48, G01N1/28) (пробы крови смешивают с антикоагулянтом КЗ-ЭДТА и физиологическим раствором в соотношении 1 : 1, на основе первого раствора готовят второй раствор с 0,5 % NaOH в соотношении 2 : 1, инкубируют полученный раствор при 60 °С в течение 5–10 мин, центрифугируют при 3000 об./мин в течение 5 мин, надосадочную жидкость удаляют, осадок инкубируют при 37 °С в течение 10 мин, осадок обрабатывают 1%-ным раствором Люголя в соотношении 1 : 1, готовят мазки, высушивают их при 37 °С в течение 15–20 мин и микроскопируют с объективами 10 и 40;
5) Метод Knott [11] (в пробирку с 1 мл свежей крови приливают 10 мл 2%-ного раствора формалина и смесь центрифугируют в течение 5 мин при 1000–1500 об./мин. Надосадочную жидкость удаляют, осадок смешивают в равных количествах с 0,1%-ным раствором метиленовой сини. Из окрашенного осадка делают мазок и исследуют под микроскопом.

Результаты и обсуждение

Первый случай обнаружения D. immitis в Якутии был зафиксирован в феврале 2006 г. при вскрытии 5-летней собаки. Гельминты были обнаружены в правом желудочке сердца. В 2009–2010 гг. выявлено пять случаев паразитирования D. immitis у собак при интенсивности инвазии от 7 до 20 экз. (рис. 1, 3) и один случай – у песца (рис. 2).


Взрослые D. immitis в сердце у собаки (по Г.Г. Колесовой)
Рис. 1. Взрослые D. immitis в сердце у собаки (по Г.Г. Колесовой)

D. immitis в сердце у песца
Рис. 2. D. immitis в сердце у песца

D. immitis в сердце у собаки
Рис. 3. D. immitis в сердце у собаки

При изучении внешнего строения половозрелых D. immitis нами выявлены следующие особенности их морфологии: D. immitis – длинные нематоды светло-желтого цвета, слегка суживающиеся к концам, паразитирующие в сердце и легочных артериях. Длина тела самки 250–300, самца 120–180 мм, максимальная ширина – 0,75–1,514 и 1,124–1,286 мм соответственно. У самки хвостовой конец закруглен, вульва располагается на расстоянии 1,651–2,272 мм от головного конца, у самца – конический, снабжен двумя боковыми крыльями. Половозрелые D. repens обнаружены в подкожной клетчатке двух собак и одной кошки, длина тела самцов – до 50 мм, самок – более 100 мм, кутикула белая, с четкой продольной и поперечной исчерченностью. Ротовое отверстие простое, капсула рудиментарная. D. repens обнаружены в кожном новообразовании у собаки породы лайка четырех лет. При микроскопическом исследовании гистосрезов выявлено, что в рыхлой соединительной ткани разбросаны полиморфоядерные лейкоциты, местами видны эпителиоидные и лимфоидные клетки, в паренхиме ткани – неполовозрелые нематоды D. repens. Морфологические характеристики соответствуют данным Петрова [7], Архипова, Архиповой [3].

При сравнительном испытании эффективности различных методов выделения из крови микрофилярий обнаружено, что недостатком способов 1, 2 является то, что при низкой интенсивности инвазии эти методики неэффективны. Слабыми сторонами способов 3–5 является то, что во время центрифугирования личинки подвергаются жесткому механическому воздействию, меняется их морфологическая структура, затрудняющая их идентификацию до вида. Выделение микрофилярий (личинок) из осадка, состоящего из клеток белой крови, разрушенных гемолизированных эритроцитов, паразитических организмов иной этиологии, кристаллов холестерина, раствора краски и неподвижных микрофилярий требует выполнения очень большой кропотливой работы лаборанта.

При разработке эффективного способа выделения из крови микрофилярий с концентрацией последних без центрифугирования исходили из факта, что кровь с антикоагулянтом разделяется на плазму и осадок (форменные элементы); за 20–24 ч на поверхности осадка образуется едва заметное углубление.

Предлагаемый нами способ выполняется в следующем порядке: пробы крови в пробирке с антикоагулянтом КЗ-ЭДТА ставят в прохладное место при температуре 4–15 °С на 20–24 ч, при этом кровь разделяется на плазму и осадок; последний на своей поверхности, граничащей с плазмой, образует углубление – воронку, на дне которой концентрируются микрофилярии. Со дна воронки отбирают жидкость (плазму) в количестве 15–20 мкл, смешивают с 1%-ным раствором Люголя, готовят мазки и микроскопируют. Форма воронки на поверхности осадка образуется из-за выпуклого в нижнюю сторону дна стеклянной пробирки, в которой была набрана кровь с антикоагулянтом.

Результаты наших исследований показали высокую зараженность домашних плотоядных дирофиляриями в условиях г. Якутска и пригорода (D. immitis обнаружен у шести собак и одного песца, D. repens выявлен в подкожной клетчатке двух собак, одной кошки и в кожном новообразовании одной собаки). Предлагаемый способ выделения из крови собак микрофилярий позволяет: концентрировать личинок дирофилярий в крови без центрифугирования, собрать личинок не с осадка, а с плазмы, представляющей жидкость соломенного цвета, уменьшить трудоемкость выделения из крови микрофилярий без посторонних примесей. Без центрифугирования нежные ткани личинок не подвергаются механическому воздействию, деформирующему их морфологическую структуру, затрудняющую идентификацию до вида.

Литература

1. Архипов И.А., Березкина С.В., Демидов Н.В. Дирофиляриоз собак в Сурхандарьинской области // Матер. науч. конф. Всес. о-ва гельминтол. – 1983.–С. 104–105.
2. Архипова Д.Р. Тенденции к созданию очагов дирофиляриоза и меры борьбы с ним // Матер. конф. Всер. о-ва гельминтол. – М., 1994. – С. 6–9.
3. Архипов И.А., Архипова Д.Р. Дирофиляриоз. – М., 2004. – 194 с.
4. Гаврилов А.А. Гельминты и гельминтозы собак Казахстана (фауна, эпизоотология, терапия и химиопрофилактика): Дис. ... канд. вет. наук. – Алма-Ата, 1976. – 143 с.
5. Делянова Р.Ш. Распространение гельминтозов собак по разным географическим зонам СССР: Дис. ... канд. биол. наук. – М., 1962. – 522 с.
6. Козлов Д.П., Скворцова Н.А. К распространению D. immitis в Хабаровском крае // Тез. докл. науч. конф. Всес. о-ва гельминтол. – 1962. – Ч. 1. – С 84–86.
7. Петров A.M. Гельминтологическое исследование тканей // Ветеринарная лабораторная практика. – М.: Изд. сельхоз. литературы, журн. и плакатов, 1963. – Т. 2. – С. 218–219.
8. Попова Т.И. Гельминтологическое исследование тканей // Ветеринарная лабораторная практика. – М.: Изд. сельхоз. литературы, журн. и плакатов, 1963. – Т. 2. – С. 218–230.
9. Сухова М.В. Эпизоотологический надзор при дирофиляриозе плотоядных в условиях Среднего и Нижнего Поволжья: Автореф. дис. ... канд. вет. наук. – 2002. – 22 с.
10. Худавердиев Т.П., Джафаров Ш.М. К изучению распространения дирофиляриоза кровососущими насекомыми в условиях Нахичеванской АССР // Уч. зап. Азерб. гос. унив-та. – 1979. – Вып. 1. – С. 16–21.
11. Knott J.I. Method for making microfilarial surveys on day blood // Trans. R. Soc. Trop. Med. Hyg. – 1939. – V. 33. – P. 191–196.
12. Kume S. Epizootology of canine heartworm disease in the Tokyo area: diagnosis and treatment // Proc. 1-st Intern. Symp. оn Can. Heartwom Dis. – 1970. – P. 18–33.
13. Tarello W. Subcutaneous canine dirofilariasis due to Dirofilaria (Nochtiella) repens of American origin in Italy. Case report // Rev. Med. Vet. – 2000. – V. 151, № 11. – P. 1053–1058.


© 2016 The Author(s). Published by All-Russian Scientific Research Institute of Fundamental and Applied Parasitology of Animals and Plants named after K.I. Skryabin.
This is an open access article under the Agreement of 02.07.2014 (Russian Science Citation Index (RSCI) and the Agreement of 12.06.2014 (CABI.org / Human Sciences section).