Эпизоотическая ситуация по куриному клещу и эффективность препарата биорекс-ГХ в производственном опыте

Лечение и профилактика
УДК 619:616.995.42:636.52/.58
DOI: 10.12737/11777
Поступила в редакцию 15.02.2015
Принята в печать 14.03.2015
Скачать статью в PDF формате
English version

Эпизоотическая ситуация по куриному клещу и эффективность препарата биорекс-ГХ в производственном опыте

Р. Т. Сафиуллин, Л. А. Бондаренко, Ю. С. Вавилов
Всероссийский научно-исследовательский институт фундаментальной и прикладной паразитологии животных и растений имени К. И. Скрябина,
117218, Москва, ул. Б. Черемушкинская, д. 28, e-mail: safiullin@vniigis.ru

Реферат

Цель исследования – изучение степени контаминацииобъектов внешней среды птичников инвазионными элементами куриного клеща Dermanyssus gallinae и оценка эффективности препарата биорекс-ГХ при арахноэнтомозах.

Материалы и методы. Для определения степени контаминации птичников инвазионными элементами D.gallinae брали по 20 соскобов с объектов внешней среды (пола, поверхности стен, проходов и т. д.). В чашках Петри подсчитывали под микроскопом число клещей с учетом яиц, личинок, нимф и имаго. Для дезакаризации птичника в период подготовки использовали 2,5%-ный концентрат биорекса-ГХ (ДВ циперметрин) в рабочей концентрации 0,005 % при норме расхода 150 мл на 1 м² и экспозиции 24 ч. На завершающем этапе подготовки проводили дезакаризацию с использованием той же концентрации препарата при норме расхода 75 мл на 1 м². Эффективность препарата учитывали еженедельно в течение первого месяца и через каждые две недели в последующем путем учета числа клещей в установленных ловушках.

Результаты и обсуждение. Установлена 45%-ная пораженность исследованных проб при обнаружении 3–12 экз. D.gallinae в одной пробе. Соскобы с поверхности стен поражены клещами на 40 %, технологического оборудования – на 20, проходов – на 10 %. Эффективность препарата в разные сроки после обработки составила 88,5 и 85,1 %.Проведенные биорексом-ГХ  обработки оказали положительное влияние на сохранность, продуктивность и другие производственно-экономические показатели.

Ключевые слова: куры, птичник, Dermanyssus gallinae,контаминация, интенсивность инвазии, биорекс-ГХ, эффективность.

Введение

В птицеводстве России остается немало проблем, требующих комплексного решения, в числе которых паразитарные болезни в птицеводческих хозяйствах разных форм собственности. Важным фактором в развитии отечественного птицеводства является недопущение паразитирования в помещениях птицефабрик эндо- и экзопаразитов, а также зоофильных мух. Повышение концентрации поголовья птицы на ограниченной территории, создание оптимальной температуры и влажности воздуха и другие факторы создают благоприятные условия для круглогодичного развития и паразитирования в помещениях кокцидий и членистоногих.

Большой ущерб птицеводству наносит куриный клещ Dermanyssus gallinae, который является кровососущим эктопаразитом. Он может переносить возбудителей боррелиоза птиц, орнитоза, холеры и чумы. При массовом их нападении на птиц отмечают снижение яйценоскости, потерю массы тела и гибель. Клещи обитают в птичниках, а места их укрытия – щели, трещины, пыль на стене, клетках и мусор. В птичниках при постоянной температуре 20–25 ^оС клещи нападают на птиц в течение всего года.

Исходя из отмеченного, целью нашей работы было испытание эффективности биорекса-ГХ против куриного клеща и других эктопаразитов в птичниках при напольном содержании ремонтного молодняка кур. 

Материалы и методы

Исследования по испытанию эффективности препарата биорекс-ГХ при арахноэнтомозах птиц проводили в неблагополучном по инвазии племенном птицеводческом хозяйстве «Кучинский» Московской области. Хозяйство благополучно в отношении инфекционных болезней кур. Птицу содержат в широкогабаритных и механизированных птичниках вместимостью по 5 тыс. кур. Также имеются брудергаузы с выращиванием цыплят на полу, колонии и акклиматизаторы и инкубатор, удаленные от маточных птичников на 100–300 м. Кур содержат как на глубокой подстилке, так и на постоянно сменяемой. Молодняк выращивают раздельно и в возрасте 100–110 сут (с августа по ноябрь) переводят в маточные птичники. В хозяйстве 80 % кур после первого года использования  ежегодно заменяют и 20 % оставляют для племенной работы. Кормление осуществляют комбикормом, сбалансированном по протеину, витаминно-минеральному составу и аминокислотам.

На первом этапе устанавливали исходную контаминацию объектов внешней среды в двух птичниках клещом Dermanyssus gallinae и другими паразитами путем взятия по 20 соскобов из разных участков пола, по пять соскобов с поверхности стен, технологического оборудования и по 10 – с проходов. Паразитологические исследования взятых проб проведены в условиях лаборатории ВНИИП им. К. И. Скрябина по общепринятым методикам. Наличие других эктопаразитов у птиц устанавливали путем осмотра и обследования по 10–15 голов ремонтного молодняка и кур из разных мест каждого птичника. Кроме того, использовали специальные ловушки для оценки числа клещей в птичниках. По 6–10 ловушек на птичник устанавливали на расстоянии 20–100 см от птиц на 24 ч. Затем их убирали и пойманных паразитов помещали в пластиковые пакеты с указанием номера птичника, ловушки и даты. Собранный материал транспортировали в лабораторию и замораживали при температуре – 18 ^оС. После этого убитых клещей из открытых ловушек и пластиковых пакетов помещали в чашки Петри, подсчитывали и идентифицировали по стадии их развития – яйца, личинки, нимфы и взрослые. После определения фонового показателя по численности клещей и завершения технологического цикла производства проводили дезакаризацию по «грязному» путем нанесения биорекса-ГХ согласно инструкции по применению. Параметры птичника-маточника (№ 7): 84 × 12,5 × 2,5 × 2 = 5250 м² (общая площадь).

Норма расхода рабочего раствора для обработки по «грязному» – 150 мл на 1 м². Потребность рабочего раствора для обработки всего птичника составила 788 л. Дезакаризацию проводили с помощью оборудования Унигрин, вместимость бака 125 л. На одну заправку Унигрина было необходимо 0,25 л 2,5%-ного концентрата биорекса-ГХ, а на шесть заправок – 1,5 л. Время нанесения биорекса-ГХ ветоператором с указанным оборудованием составило 2 ч 50 мин.

Рабочую эмульсию препарата готовили непосредственно перед использованием в концентрации 0,005 %, которую наносили на наиболее вероятные места скопления клещей – стены, стыки стен, трещины, щели, клетки, пол, помет и др. при экспозиции 24 ч. Затем проводили уборку и чистку птичника согласно принятой технологии и дезинфекцию 0,5%-ным раствором вироцида. На завершающем этапе подготовки в опытном птичнике осуществляли дезакаризацию по «чистому» с использованием водной  эмульсии биорекса-ГХ.

Для второй обработки использовали биорекс-ГХ из расчета 75 мл на 1 м². Время на вторую обработку птичника (4 заправки по 125 л) составило 2 ч 10 мин при экспозиции 24 ч. Затем помещение проветривали в течение не менее одного часа; погибших эктопаразитов уничтожали; обработанные поверхности промывали водой, кормушки и поилки тщательно мыли 3%-ным раствором кальцинированной соды и ополаскивали водой. В контрольном птичнике (№ 5) дезакаризацию проводили с использованием рекомендованной дозы хлорофоса.

На втором этапе на 24 ч устанавливали 6–10 ловушек в каждом птичнике. После их снятия подсчитывали число клещей до и после посадки ремонтного молодняка кур. Затем проводили газацию птичников с использованием формалина.

Для оценки эффективности применения биорекса-ГХ против куриного клеща и других эктопаразитов еженедельно в течение первого месяца и через каждые две недели в последующем устанавливали на 24 ч ловушки и подсчитывали число клещей. В случае их обнаружения в опытном птичнике, где обработку проводили биорексом-ГХ, если число клещей составляло более 10 % фонового уровня, планировали проведение двукратной обработки птичника с интервалом 7 сут с ранее отмеченной концентрацией препарата. Результаты систематических акарологических исследований показали наличие куриного клеща через четыре недели после перевода ремонтного молодняка, но их число было существенно ниже фонового.

В течение всего периода опыта за цыплятами вели ежедневные клинические наблюдения за общим состоянием, приемом корма и воды, видимыми физиологическими изменениями и т. д.

Совместно с ветслужбой хозяйства учитывали производственные показатели опытного и контрольного птичников, такие как общее поголовье при посадке, ежедневно число павших птиц, яйценоскость, среднюю яйценоскость, у молодняка – среднее число павших цыплят, их сохранность, среднесуточный прирост массы, конверсию корма на прирост. Также уточняли принятую в хозяйстве технологическую карту ветеринарных мероприятий. Полученные в ходе производственного испытания биорекса-ГХ экспериментальные данные были подвергнуты статистическому анализу по методике Плохинского [16] с определением их значимости.

 

Результаты и обсуждение

При исследовании проб и соскобов, взятых из птичников № 7 и 5, где содержались куры и петухи, установлена высокая загрязненность инвазионными элементами. Так, в птичнике-маточнике № 7 при обследовании 20 соскобов из разных участков пола D. gallinae и их яйца были выделены в девяти пробах, что составляет 45 %. При этом число клещей колебалось от трех до 12 экз. в одной пробе (табл. 1). Также в исследованных пробах находили ооцисты Eimeria spp., яйца Ascaridia galli и Heterakis gallinarum. При осмотре и обследовании 10 кур-несушек у трех были установлены пухо-пероеды Menopon gallinae, Lipeurus caponis и Goniodes holohaster при слабой интенсивности инвазии – от двух до семи экз. Из пяти обследованных соскобов с поверхности стен клещи выделены в двух (40 %).

При обследовании пяти соскобов с технологического оборудования клещи найдены в одной (20 %). Из проходов птичника было обследовано 10 соскобов и клещи выделены в одной.

В обследованных соскобах со стен среднее число инвазионных элементов (имаго клещей и их яйца) составило 17 экз., в пробе с технологического оборудования – 8, в пробе из прохода – 10 экз.

1. Исходная загрязненность объектов внешней среды птичников 

инвазионными элементами

Объект	Обследовано соскобов	Из них положительных	Процент заражения	Интенсивность инвазии, экз.
Птичник № 7
Пол	20	9	45	12
Стены	5	2	40	17
Технологич. оборуд.	5	1	20	8
Проходы	10	1	10	10
Птичник № 5
Пол	20	10	50	15
Стены	5	3	60	21
Технологич. оборуд.	5	1	20	7
Проходы	10	2	20	13

Исходная загрязненность птичника-маточника № 5 инвазионными элементами отличалась несущественно. При обследовании 20 соскобов с пола клещи обнаружены в 10 (50 %), а их число колебалось от семи до 23 экз. При обследовании пяти соскобов со стен клещи и их яйца выделены в трех (60 %). Из пяти соскобов с технологического оборудования в одной найдены клещи (10 %). Из проходов птичника было обследовано 10 соскобов и клещи установлены в двух (20 %). При осмотре 10 кур-несушек у двух найдены пухо-пероеды при слабой интенсивности инвазии.

После установления исходной загрязненности объектов внешней среды птичников-маточников инвазионными элементами, согласно принятой технологии производства, через две недели все поголовье кур и петухов было сдано на убой. Проведена дезакаризация по «грязному» с использованием биорекса-ГХ и хлорофоса. Затем проведена уборка, заключительная очистка, мытье, еще дезакаризация, но по «чистому» и дезинфекция. В опытном птичнике против членистоногих использовали водный раствор биорекса-ГХ; обрабатывали поверхности стен, пол, перегородки и оборудование. В контрольном птичнике проводили аналогичные процедуры, но с использованием хлорофоса. После окончания обработок двери птичников были закрыты в течение двух часов, после чего проводили осмотр птичников совместно с ветработниками хозяйства и научными сотрудниками ВННИП. При осмотре на полу опытного птичника № 7 было обнаружено большое число погибших насекомых – жуков: от двух до 17 экз. на 1 м².

Согласно требований Ветеринарного законодательства России в птичнике была проведена дополнительная уборка для сбора и удаления погибших жуков.

При определении видовой принадлежности собранных паразитов в условиях лаборатории ВНИИП с использованием определителя насекомых Плавильщикова (1957) установлена их принадлежность к типу – членистоногие, классу – насекомые (Insecta), отряду – жесткокрылые (Colеoptera), семействам чернотелки или хрущак большой и средний (Tenebrionidae) и жужелицы (Carabidae).

В контрольном птичнике погибших жуков было мало.

Проведенные исследования показали, что все пробы из опытного птичника, где для дезакаризации применяли рекомендованную концентрацию и дозу препарата биорекс-ГХ, были свободны от клеща и других эктопаразитов и их яиц.

В контрольном птичнике после обработки рекомендованной дозой хлорофоса эктопаразиты были найдены во все сроки исследований. Согласно полученных результатов использование биорекса-ГХ обеспечило полную санацию птичника от членистоногих.

Проведенные нами паразитологические исследования соскобов с пола и стен, а также ремонтного молодняка кур, содержащихся в опытном птичнике № 7, где для дезакаризации использовали рекомендованную инструкцией концентрацию и дозу биорекса-ГХ через 7, 14, 21 и 28 сут после перевода были свободны от куриного клеща и других эктопаразитов (табл. 2).

В дальнейшем, при исследовании через 42 и 56 сут после перевода птиц куриные клещи установлены в двух и трех случаях из 20 обследованных. ЭИ составила 10 и 15 % соответственно при интенсивности инвазии от двух до пяти экз. в одной пробе. В соскобах из проходов опытного птичника клещи найдены в одном случае при каждом исследовании (10 %). Затем происходило небольшое нарастание инвазии. Так, через 70 и 84 сут после перевода птиц куриных клещей находили в четырех и пяти случаях из 20 обследованных проб (20 и 25 % соответственно). Их число в одной пробе колебалось от трех до девяти экз.

При исследовании через 100 и 120 сут после перевода птиц в маточник куриные клещи установлены в пяти и шести случаях из 20 обследованных (25 и 30 % соответственно). Число клещей в одной пробе колебалось от трех до 11 экз.

Через 28, 56 и 84 сут после перевода в опытный птичник проводили осмотр и обследование по 10 птиц на наличие эктопаразитов и каждый раз констатировали их отсутствие.

В контрольном птичнике № 5, где дезакаризацию проводили хлорофосом, паразитов находили в пробах с пола и стен во все сроки исследования. Так, ЭИ при исследовании через 7, 14, 21, 28, 42, 56, 70, 84, 100 и 120 сут после перевода молодняка составила 15, 20, 25, 40, 60, 50, 55, 40, 40 и 45 % соответственно. Загрязненность соскобов из проходов птичника куриным клещом в отмеченные сроки исследований равнялась 10, 10, 20, 40, 50, 50, 40, 40, 30 и 30 %.

В контрольном птичнике в первые четыре недели после перевода среднее число D. gallinae в одной обследованной пробе составило 17 экз.; в дальнейшем интенсивность инвазии заметно выросла и колебалась от 26 до 49 экз. В соскобах с проходов контрольного птичника при паразитологическом исследовании число обнаруженных клещей колебалось от 13 до 32 экз.

2. Загрязненность объектов внешней среды птичников D. gallinae

при исследовании в разные сроки после перевода ремонтного молодняка

Группа	Обследовано соскобов со стен	Из них положительных	Процент заражения	Обследовано проб с пола проходов	Из них положительных	Процент заражения
7 сутки
Опытная	20	0	0	10	0	0
Контрольная	20	3	15	10	1	10
14 сутки
Опытная	20	0	0	10	0	0
Контрольная	20	4	20	10	1	10
21 сутки
Опытная	20	0	0	10	0	0
Контрольная	20	5	25	10	2	20
28 сутки
Опытная	20	0	0	10	0	0
Контрольная	20	8	40	10	4	40
42 сутки
Опытная	20	2	10	10	1	10
Контрольная	20	12	60	10	5	50
56 сутки
Опытная	20	3	15	10	1	10
Контрольная	20	10	50	10	5	50
70 сутки
Опытная	20	4	20	10	1	10
Контрольная	20	11	55	10	4	40
84 сутки
Опытная	20	5	25	10	2	20
Контрольная	20	8	40	10	4	40
100 сутки
Опытная	20	5	25	10	3	20
Контрольная	20	8	40	10	2	30
120 сутки
Опытная	20	6	30	10	2	20
Контрольная	20	9	45	10	3	30

Проведенные исследования проб и соскобов из контрольного птичника в отношении D. gallinae показали неэффективность использованного для дезакаризации хлорофоса.

Таким образом, инсектоакарицидный препарат биорекс-ГХ, применяемый в период подготовки птичника, в рекомендованной концентрации и дозе обеспечивает полную санацию птичника-маточника, где в течение 28 сут D. gallinae и других эктопаразитов не находили. В дальнейшем при исследовании с 42 и до 120 сут после перевода птицы экстенсивность инвазии D. gallinae колебалась от 10 до 30 % при слабой интенсивности инвазии.

Для оценки эффективности применения биорекса-ГХ использовали интенсэффективность или процент снижения числа D. gallinae, которую устанавливали в разные периоды после перевода птицы, по формуле:

ИЭ =  × 100, где интенсэффективность препарата, %; КДк – среднее число D. gallinae в одной пробе из контрольного птичника, экз.; КДо – то же в опытном птичнике, экз.

ИЭ – И первые четыре недели после перевода птиц в опытном птичнике, где применяли биорексом-ГХ, D. gallinae не находили; эффективность составила 100 %.

За период с 42 до 70-е сутки после перевода в опытный птичник интенсэффективность составила:

ИЭ =  × 100 = 88,5 % (Р ˂ 0,05)

За период с 84 до 120-е сутки после перевода в опытный птичник интенсэффективность составила:

ИЭ =  × 100 = 85,1 % (Р ˂ 0,05)

Анализ результатов исследований проб и соскобов из опытного птичника № 7 после дезакаризации с использованием биорекса-ГХ в рекомендованной дозе и экспозиции показал его надежность, удобство в применении и эффективность против D. gallinae и других эктопаразитов птиц при напольном содержании ремонтного молодняка кур. Полной профилактики инвазии D. gallinae не было, хотя в течение первых 28 сут после перевода птиц в обследованных пробах клещей не находили. В дальнейшем, экстенсинвазированность клещами колебалась от 10 до 30 % при слабой интенсивности инвазии. За период с 42 до 70 сут после перевода в опытный птичник интенсэффективность равнялась 88,5 %.

Отсутствие D. gallinae в опытном птичнике-маточнике в течение 28 сут после перевода ремонтного молодняка и их небольшое число при дальнейших исследованиях оказали положительное влияние на сохранность и продуктивные показатели. Сохранность в опытном птичнике № 7 составила 98,2, а в контроле 96,1 % (табл. 3). Средняя масса одной головы через четыре месяца после перевода в опытной группе достигала 1975 г, а в контроле – 1760 г. Среднесуточный прирост массы в опытной группе составил 5,83, в контроле – 4,64 г. Затраты корма в расчете на одну голову за весь период выращивания в опытной группе составил 13,1, в контроле – 14,5 кг.

Полученные результаты свидетельствуют, что лучшие экономические показатели получены в опытном птичнике, где в период подготовки птичника для обработки использовали инсектоакарицидный препарат биорекс-ГХ в рекомендованной дозе. Клещей после обработки биорексом-ГХ в птичнике не обнаружили. В дальнейшем, в течение 28 сут после перевода птицы обследованные пробы были свободны от D. gallinae.

3. Производственные показатели выращивания ремонтного молодняка кур в опыте по испытанию биорекса-ГХ против эктопаразитов птиц

Номер птичника	При посадке		Сохранность за весь период наблюдения, %	Средняя масса 1 головы в 120-днев-ном возрасте, г	Среднесуточный прирост массы, г	Затраты корма на 1 голову за весь период наблюдения, кг
	поголовье	масса 1 головы, г
7 (опытный)	5430	1275	98,2	1975±70,5	5,83±0,76	13,1
5 (контрольный)	5526	1203	96,1	1760±68,4	4,64±0,83	14,5

Литература

1. Акбаев М.Ш. и др. Паразитология и инвазионные болезни животных.– М., 1998. - 743 с.

2. Альберт А. Избирательная токсичность. – М., 1989.-432 с.

3. Балашов Ю.С. Паразито-хозяинные отношения членистоногих с наземными животными. – Л.: Наука, 1982. - 320 с.

4. Беклемишов В.Н. Биоценологические основы сравнительной паразитологии. – М.: Наука, 1970.-320 с.

5. Веселкин Г.А. Зоофильные мухи домашних животных фауны СССР: Автореф. дис. ... д-рабиол. наук. – Ленинград, 1993. – 29с.

6. Дербенева–Ухова В.П. Мухи и их эпидемиологическое значение. – М.: Медгиз, 1952. – 271с.

7. Инструкция о мероприятиях против кровососущих двукрылых насекомых (гнуса) в животноводстве. – М.: Колос, 1981.

8. Казакова И.К. и др. О методах и средствах профилактики и борьбы при арахноэнтомозах животных // Тр. ВНИИВСГЭ. – 1993. – Т. 93, Ч.1. – С. 94–98.

9. Кербабаев Э.Б.,  Василевич ФИ., Катаева Т.С., Розовенко М.В. Арахноэнтомозы сельскохозяйственных животных. Учебное пособие- М., 2000. – 136 с.

10. Машковский М.Д. Лекарственные средства. – М., 1993.-1164 с.

11. Методика определения экономической эффективности ветеринарных мероприятий. – М., 1997.

12. Методические рекомендации «Оценка токсичности и опасности препаратов дезинсекции». – М., 1990, 33 с.

13. Павлов А. В. Справочник по пестицидам. – М., 1986.- 432 с.

14. Правила проведения дезинфекции и дезинвазии объектов государственного ветеринарного надзора. – М., 2002.

15. Плохинский Н.А. Математические методы в биологии. – М., 1978.-168 с.

16. Сафиуллин Р.Т. Эффективность себацила при паразитарных болезнях животных // Ветеринария. – М., 1995. – №5. – С. 37–39.

17. Солопов Н.В. О сезонной и суточной динамике лета мух, подкожного и носоглоточного оводов северных оленей // Науч.-техн. бюл. «Вопросы вет. арахноэнтомологии». – Тюмень, 1976. – Вып.7. – С. 23–26.

18. Тетраметрин. Гигиенические критерии состояния окружающей среды. ВОЗ №98. – Женева, 1992.

19. Тимофиевская Л.А. Пиретроиды. – М.: МРПТХВ, 1990.-С. 145-148.

20. Циперметрин. Здоровье и рекомендации по безопасности. – Женева, 1989.-http://docs.cntd.ru/document/901879615

© 2015 The Author(s). Published by All-Russian Scientific Research Institute of  Fundamental and Applied Parasitology of Animals and Plants named after K.I. Skryabin. 
This is an open access article under the Agreement of 02.07.2014 (Russian Science Citation Index (RSCI)) and the Agreemnt of 12/06/2014 (CABI org / Human Sciences section)