Скачать статью в PDF формате
English version
ЭКОЛОГИЯ И БИОЛОГИЯ ПАРАЗИТОВ
УДК 619:616.995.122
DOI:
Поступила в редакцию 22.03.2017
Принята в печать 19.09.2017
Для цитирования:
Подолько Р. Н., Горохов В. В. Партеногенетическое развитие Metagonimus yokogawai (Katsurada, 1912) // Российский паразитологический журнал. – М., 2017. – Т.41, Вып.3. – С.
For citation:
Podolko R. N., Gorokhov V. V. Partnogenetic development Metagonimus yokogawai (Katsurada, 1912). Russian Journal of Parasitology, 2017, V. 41, Iss.3, pp.
ПАРТЕНОГЕНЕТИЧЕСКОЕ РАЗВИТИЕ Metagonimus yokogawai (KATSURADA, 1912)
Подолько Р. Н., Горохов В. В.
Всероссийский научно-исследовательский институт фундаментальной и прикладной паразитологии животных и растений имени К. И. Скрябина, 117218, Москва, ул. Б. Черемушкинская, д. 28, e-mail: ramses66682@mail.ru, gorohov@vniigis.ru.
Реферат
Цель исследования ‒ изучить Semisulcospiro cancellata, первого промежуточного хозяина Metagonimus yokogawai (Katsurada, 1912) на территории Амурской области.
Материалы и методы. Материал для исследования брали в водоемах Амурской области. Всего исследовано 6764 моллюска Semisulcospiro cancellata. Собранных моллюсков рассаживали по чашкам Петри и в течение нескольких дней выявляли эмиссирующих особей. В дальнейшем, под бинокуляром изучали моллюсков на наличие личинок трематод. Печень моллюсков брали сразу после их умерщвления. Извлечённый материал фиксировали в жидкости Карнуа. Для приготовления гистологических препаратов объекты исследования фиксировали в свежеприготовленном растворе Карнуа. Затем материал промывали в 2‒3-х сменах 70%-ного этанола и после последующего обезвоживания заливали в парафин согласно стандартной методике. Приготовленные на микротоме срезы толщиной 4‒6 мкм окрашивали гематоксилином Бемера с подкраской 0,1%-ным раствором эозина. Для исследований использовали бинокуляр МБС-8, микроскоп Микромед-1. Измерения объектов проводили традиционным способом с использованием объективов × 4, × 10 и × 40. Морфологическое исследование проводили на полутонких и ультратонких срезах методом трансмиссионной микроскопии. Полутонкие и ультратонкие срезы получали на ультратоме «ЛКБ-NOWA». Исследование и фотографирование ультратонких срезов осуществляли на электронном микроскопе TecnaiG2 SpirtTWN.
Результаты и обсуждение. Изучено строение редий M. yokogawai, формирование партенит в печени моллюска S. cancellata. Тело редии M. yokogawai мешковидной формы. Редия одета снаружи кутикулой. На переднем конце располагается присоска округлой или вытянутой формы, от которой отходит глотка, переходящая в слепо замкнутый мешок кишечника. В задней трети тела редии находятся зародышевые шары и дочерние редии. Кишечник со стороны полости выстлан кишечным эпителием. От апикальных частей эпителиальных клеток в полость кишечника отходят ультрамикроскопические микроворсинки. На наружной стенке кишечник выстлан крупными плоскими клетками, плотно прилегающими друг к другу.
Ключевые слова: Metagonimus yokogawai, редии, партениты, Амурская область.
Введение
В последнее время возрастает интерес к личиночным стадиям паразитов (редии, церкарии и метацеркарии), что привело к появлению множества работ, посвященных изучению этих стадий жизненного цикла трематод [7, 8]. За последние десятилетия накоплено большое количество материала, касающегося развития и биологии трематод. Однако, несмотря на общепризнанный факт того, что актуальность изучения жизненного цикла общепризнана, знания о развитии личиночных стадий, в особенности конкретных представителей трематод (M. yokogawia) остаются противоречивыми, а порой и невыясненными.
Имеются исследования, посвященные анализу закономерностей размножения редий и спороцист различных видов дигеней [1, 2, 4], что даёт новые критерии для описания этих процессов.
Вопрос изучения отношений паразит-хозяин у трематод остаётся открытым как для изучения эпидемиологии и эпизоотологии паразита, так и вопроса формирования редий и спороцист в первом промежуточном хозяине [3], что и стало целью наших исследований.
Материалы и методы
Материал для исследования брали в водоемах Амурской области: притоках р. Зея ‒ р. Ивановка, р. Белая, р. Голубая, р. Горбыль, р. Томь в среднем и нижнем течениях; притоках р. Амур ‒ р. Гильчин, протока р. Амур (с. Константиновка); притоках р. Селемджа ‒ р. Нора; р. Бурея и ее притоках с правой стороны ‒ Большие и Малые Симичи и с левой ‒ Новотомка и Джелунда [5].
Было исследовано 6764 моллюска Semisulcospiro cancellata, отобранных из р. Юга (рис. 1).
Рис. 1. Моллюск Semisulcospiro cancellata, промежуточный хозяин Metagonimus yokogawai (Katsurada, 1912)
Собранных в природе моллюсков в лаборатории рассаживали по чашкам Петри (объемом от 15 до 50 мл в зависимости от размеров объекта) и в течение нескольких дней выявляли эмиссирующих особей.
В дальнейшем, под бинокуляром изучали моллюсков на наличие личинок трематод.
Печень моллюсков брали сразу после их умерщвления. Извлечённый материал фиксировали в жидкости Карнуа. Для приготовления гистологических препаратов объекты исследования фиксировали в свежеприготовленном растворе Карнуа. Затем материал промывали в 2‒3-х сменах 70%-ного этанола и после последующего обезвоживания заливали в парафин согласно стандартной методике. Приготовленные на микротоме (МПС) срезы толщиной 4‒6 мкм окрашивали гематоксилином Бемера с подкраской 0,1%-ным раствором эозина.
Для исследований использовали бинокуляр МБС-8, микроскоп Микромед-1. Измерения объектов проводили традиционным способом с использованием объективов × 4, × 10 и × 40.
Морфологическое исследование проводили на полутонких и ультратонких срезах методом трансмиссионной микроскопии.
Полутонкие и ультратонкие срезы получали на ультратоме «ЛКБ-NOWA». Исследование и фотографирование ультратонких срезов осуществляли на электронном микроскопе TecnaiG2 SpirtTWN.
Результаты и обсуждение
Редии метагонимуса имеют мешковидную форму (рис. 2, 3), кишечник развит слабо. Церкарии, покидающие дочерних редий, еще полностью не сформированы, их органогенез завершается в тканях печени моллюсков. Материнские редии отличаются от дочерних более крупными размерами глотки. Измерениями редий (100 экз.) было установлено, что средняя длина материнских редий равна 362 мкм, дочерних редий ‒ 292 мкм. Размеры присоски у материнских редий 49 × 37 мкм, дочерних ‒ 34,8 × 34,4 мкм.
У молодых редий удается рассмотреть многочисленные железистые клетки, большинство которых сконцентрировано у заднего конца кишечника. Протоки этих желез открываются в просвет пищеварительной системы на границе глотки и кишечника.
Сформированные редии содержат от одного до двадцати зародышей, находящихся на разных стадиях развития [6].
Рис. 2. Генеративная масса паразита в печени моллюска S. cancellata, отраждающего церкарии M. yokogawai (окр. гематоксилином и эозином;
ув. 40 × 10, ориг.):
Рис. 3. Редии M. yokogawai в печени моллюска S. cancellata (окр. гематоксилином и эозином; ув. 40 × 10, ориг.):
Наружный покров редии покрыт снаружи кутикулой, которая состоит из наружного эпителиального слоя. На апикальной части эпителиальных клеток находятся микроворсинки (рис. 4).
Пищеварительная система представлена глоткой и отходящими по бокам двумя пищеварительными трубками. Стенка кишечника состоит из плоских эпителиальных клеток, тесно прилегающих друг к другу, на поверхности которых располагаются микроворсинки. Высота их колеблется от 1 до 2 мкм, ширина 0,03±0,02 (рис.5).
Рис. 4. Поперечный разрез мешка тела редии M. yokogawai (электронограмма, ув. 50000, ориг.):
Рис. 5. Продольный разрез кишечника редии М. yokogawia (электронограмма, ув. 50000, ориг.):
Выводы
Тело редии M. yokogawai (Katsurada, 1912) мешковидной формы. Редия одета снаружи кутикулой. На переднем конце располагается присоска округлой или вытянутой формы, от которой отходит глотка, переходящая в слепо замкнутый мешок кишечника.
В задней трети тела редии находятся зародышевые шары и дочерние редии.
Кишечник редии со стороны полости выстлан кишечным эпителием. От апикальных частей эпителиальных клеток в полость кишечника отходят ультрамикроскопические микроворсинки. На наружной стенке кишечник выстлан крупными плоскими клетками, плотно прилегающими друг к другу.
Литература
1. Атаев Г. Л. Развитие партенит трематод: автореф. дис. ... д-ра биол. наук. – СПбГУ, 2000. – 34 с.
2. Галактионов К. В., Добровольский А. А. Происхождение и эволюция жизненных циклов трематод. – СПб: Наука, 1998. – 404 с.
3. Гинецинская Т. А. Трематоды, их жизненные циклы, биология и эволюция. – Л.: Наука, 1968. – 411 с.
4. Добровольский А. А., Галактионов К. В., Атаев Г. Л. Особенности организации генеративного материала и динамика размножения материнских спороцист трематод // Паразитология. – 2000. – Т. 34, № 1. – С. 14–22.
5. Подолько Р. Н., Самсоненко И. А. Изучение Metagonimus yokogawia в Амурской области // Естественные и технические науки. – 2012. – № 3 (59). – С. 143–144.
6. Подолько Р. Н., Целуйко С. С., Чертов А. Д. Некоторые аспекты морфологии партенит Metagonimus yokogawia // Естественные и технические науки. – 2012. – № 3 (59). – С. 432–434.
7. Чертов А. Д., Дымин В. А., Черемкин И. М., Круглякова Л. В. Эпидемиологическое значение промежуточных и окончательных хозяев в распространении клонорхоза и метагонимоза на территории Амурской области // Матер. науч. конф. «Природопользование на Дальнем востоке России». –Хабаровск, 2006. – С. 117–119.
8. Чертов А. Д., Шатров А. С. Эпидемиология метагонимоза на территории Амурской области // Современные аспекты диагностики, лечения и профилактики заболеваний человека. – Благовещенск, 2002. – С. 555–561.
© 2017 The Authors. Published by All-Russian Scientific Research Institute of Fundamental and Applied Parasitology of Animals and Plants named after K.I. Skryabin. This is an open access article under the Agreement of 02.07.2014 (Russian Science Citation Index (RSCI)http://elibrary.ru/projects/citation/cit_index.asp) and the Agreement of 12.06.2014 (CABI.org / Human Sciences section: http://www.cabi.org/Uploads/CABI/publishing/fulltext-products/cabi-fulltext-material-from-journals-b...